Актуальность. Среди прочих острых заболеваний брюшной полости на долю кишечной непроходимости приходится от 7 до 9% случаев[1]. Согласно данным, среди заболевших превалирует в основном взрослое население, около 80% случаев – лица от 20 лет и старше[2]. Данная патология имеет тяжелое течение и неблагоприятный исход. Цифры летальности находятся в прямой зависимости от продолжительности течения заболевания и в среднем составляют от 5 до 25%[3], в свою очередь высокий процент летальности зависит от наличия осложнений, наиболее грозным из которых является перитонит. Основной причиной смерти в таком случае является полиорганная недостаточность в следствие эндогенной интоксикации[7]. Одной из частых причин возникновения непроходимости является колоректальный рак, обтурирующий просвет кишечника[4,5,6]
Цель исследования. разработка способа лечения послеоперационных парезов кишечника при экспериментальном моделировании осложнений острой кишечной непроходимости у лабораторных животных.
Материалы и методы. Объектом исследования выступиликролики породы шиншиллаобоих полов, с весовой категорией 1500 (+300) граммов в количестве n=32 особей. Все эксперименты были проведены с учётом этико-правовых аспектов обращения с лабораторными животными в условиях стерильной операционной с соблюдением правил асептики и антисептики, согласно «Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых в экспериментальных и других научных целях» (Страсбург 1987) [8]. В ходе работы лабораторные животные были разделены на 4 экспериментальные группы, после предварительной предоперационной подготовки, с целью премедикации вводили внутримышечно раствор рометара в дозе 4.0-6.0мг/кг, затем, через 20 минут, с целью введения животного в наркоз, внутримышечно вводили раствор золетила-50 в дозе 5-10мг/кг.[9] применялись следующие методы моделирования острой толстокишечной непроходимости: 1) Наложение кисетного шва на анальный сфинктер с последующей фиксацией пуговицей 2) Захватывание мягким зажимом с пластиковыми насадками на браншах передней брюшной стенки вместе с кишечной петлей в течение 30 минут, после чего процедуру повторяли в другой области живота, но уже с прижатием на 15 минут. Для угнетения моторной функции кишечника вводили внутримышечно раствор атропина в дозе 0.5 мл/кг. Лабораторные животные находились в стандартных условиях вивария, в индивидуальных клетках со свободным доступом к пище и воде, на дно клеток были постелены белые простыни с целью мониторинга динамики отхождения каловых масс, фиксировались данные по суточному потреблению воды и пищи. После получения первых признаков кишечной непроходимости производилось динамическое наблюдение каждые 2 часа, по прошествии 12 часов от начала признаков непроходимости животные получали наркоз, фиксировались, у первой группы снимались ранее установленные кисетные швы. Кролики брались на оперативное лечение, проводилась ревизия брюшной полости, рассечение спаек, штрангов, если таковые имелись, промывание, санация и дренирование. Заключительным этапом оперативного лечения являлась катетеризация брыжейки между двумя висцеральными листками тонкой силиконовой трубкой диаметром 0.2 мм, катетер выводился на переднюю брюшную стенку, в раннем и позднем послеоперационном периоде по катетеру вводился 0.25% раствор теплого новокаина в дозе 1.5 мл/кг.
Результаты и их обсуждение: с первых суток наблюдения поведение животных обеих групп значительно изменилось, снизилась активность, объем выпитой воды составлял 850+35 мл. воды на каждое животное двух групп, на вторые сутки объем потребляемой жидкости увеличился до 930+20мл., потребление пищи снизилось со 100-120 грамм гранулированного корма до 34-67 грамм, в первой группе погибли 3 (20%). У 5 (33%) животных 2 группы кал отходил свободно. На 3 сутки для оперативного лечения были взяты 12 особей первой группы, при этом, (4 животным катетер не ставился)у 10(84%) особей была обнаружена дилатация кишечника, признаки распространенного фибринозного перитонита, наличие перфорации толстого кишечника обнаружено в 2 случаях (16%), в данном случае была выполнена резекция перфорированного участка с наложением первичного анастомоза по типу «конец в конец. На 4 сутки прооперировано 12 особей, (катетер не ставился 8 животным) с признаками непроходимости из второй группы, в 10 из 12случаев (84%) обнаружены спайки, в 1 случае (8%) наличие местных признаков перитонита, ещё в 1(8%) случае наличие штранга. Из 12 прооперированных животных 1 группы в раннем послеоперационном периоде в течение 2 суток погибает 3 (2 без катетера) (25%). У остальных животных 9(75%) фиксировались поздние (12 часов после операции) отхождения каловых масс, появление аппетита, аускультировались перистальтические шумы. Подопытные животные 2 группы, послеоперационный период перенесли легче (4 катетеризированные особи 33%), общее состояние с улучшением, более раннее отхождение кала. Из 8 оперированных без катетера 5 погибли 62,5%
Заключение: Таким образом, доказано, что применение катетеризации брыжейки кишечника с послеоперационной стимуляцией раствором теплого 0,25% раствора новокаина, позволяют улучшить восстановление перистальтических движений кишечника
Литература
- .Нечаев Э.А. и др. Дренирование тонкой кишки при перитоните и кишечной непроходимости. СПб. Росмедполис, 2016.
- .Петров В.П. и др. Хирургия. 2015. № 5. С. 41– 44.
- .Теплий В.В. Украинский медицинский ж. 2004. № 5. С. 84–92.
- . Cancer of the rectum ñ palliative endoscopic treatment / K.D. Rupp [et al.] // Eur. J. Surg. Oncol.- 2015.- Vol. 21.- P.644-647.
- .Hereditary nonpolyposis colorectal cancer: clinical features and survival / T. Myrhoy [et al.] // Progr. Colorect. Cane. - 2011.- Vol. 2.- P.1-12.
- .Related Prospective evaluation of laparoscopic surgery for rectosigmoidal and rectal carcinoma / S. Yamamoto [et al.] // Dis.- ColonRectum.- 2012.- Vol. 45< № 12.- Р.1648-1654.
- Чернов В.Н. и др. Вест. интенсивной тер. 1998. № 4. С. 25 27.
- Russell W.M.N.The principles of humane experimental technique / W.M.N.Russell, R.L.Bunch.- Methuen, London, 1959.– 258
- Разина А.В.,ФроловаА.И.,Сергеев М.А. Анестезия кроликов. Казань Ветеринарная клиника №1 2008