При обработке полости абсцесса, моделированного в эксперименте, раствором антисептика «Kodan Tinkture Forte Coloured», отмечается как отсутствие признаков абсцесса, что подтверждает аутопсия, так и признаков перифокального воспаления, в отличие от контрольной группы, где отмечались данные признаки на 7 сутки. Полученные данные планиметрического исследования указывают на наличие высокой ранозаживляющей активности «Kodan Tinkture Forte Coloured» в сравнении с применяемыми методиками.
Введение.
Успешная профилактика послеоперационных инфекционных осложнений, в значительной мере связана с применением современных высокоактивных антисептических средств для обеззараживания кожи операционного поля больного, рук хирургов и медицинского персонала во время работы с больными [1,2,3].
Широкое применение антибиотиков, эффективность которых в начале была отличной, привело к возникновению ряда сложных проблем. Мутагенное действие антибиотиков на патогенную микрофлору обусловило изменение как этиологической структуры гнойной инфекции, так и биологических свойств микробной клетки с появлением антибиотико-резистентных штаммов
Эта проблема указывает на необходимость пересмотра мнения о монопольном положении антибиотиков и переходе на более обоснованную стратегию и тактику лечения гнойно-септических инфекций, включая интерес к забытой группе антибактериальных препаратов – антисептиков. [4,5].
Существующая в настоящее время сложная эпидемиологическая ситуация обосновывает повышенное внимание к профилактике инфекционных заболеваний и рост требований к качеству дезинфекционных мероприятий, направленных на уничтожение возбудителей инфекций на объектах окружающей среды, являющихся факторами их передачи. Антисептики используются людьми со времён становления цивилизации [6].
Широко известно, что древние египтяне бальзамировали мумии, и таким образом предупреждали их гниение, а в Древнем Риме использовали мёд и вино для предотвращения нагноения ран. Современное развитие и широкое применение различных антисептических средств было положено такими выдающимся учёными, как Листер, Склифосовский, Пирогов и многими другими. Современные успехи органической химии создали базу для дальнейшего развития и внедрения антисептиков в медицину [7].
Среди недостатков многих современных антисептиков можно указать интенсивный собственный цвет продукта (поливинилпирролидон-йод, красители с противомикробным действием, такие как кристаллический фиолетовый или бриллиантовый зеленый),токсикологическую неприемлемость или ограниченный диапазон действия.
Выбор дезинфектантов и антисептиков их разумное применение во многом определяет успех мероприятий по профилактике и борьбе с внутрибольничными инфекциями, позволяет обезопасить от токсического воздействия на медицинский персонал и пациентов дезинфицирующих средств и экономно расходовать денежные средства, выделяемые лечебно-профилактическим учреждениям. Поэтому использованию в ЛПУ кожных антисептиков уделяется все большее внимание, так как они реально стали более широко применяться в повседневной медицинской практике [8,9,10].
Кожные антисептики должны обладать тремя трудносочетающимися свойствами: высокой эффективностью в отношении широкого спектра микроорганизмов, отсутствием вредного воздействия на кожу и организм человека, быстрой испаряемостью с кожной поверхности.
Современное дезинфицирующее средство, как правило, представляет собой композицию на основе сбалансированной формулы, включающей одно или несколько активно действующих веществ в соотношениях, позволяющих добиться максимального синергизма или потенцирования эффекта в отношении наиболее устойчивых микроорганизмов, а также функциональных добавок, целенаправленно изменяющих их свойства. Обязательным условием для дезинфицирующего средства является его спороцидное действие [11,12].
Актуальной проблемой современной хирургии является способность антисептика влиять на регенерацию раневой поверхности. Способы лечения гнойно-некротических процессов, предложенные хирургией, свидетельствуют о том, что даже применение самых эффективных средств не снижает риск возникновения различных осложнений.
Hесмотря на большое количество отечественных и зарубежных кожных антисептиков, зарегистрированных для применения на территории РК, проблема разработки низкотоксичных, но высокоэффективных кожных антисептиков в отношении широкого спектра микроорганизмов продолжает оставаться актуальной.
В кожном антисептическом средстве должны оптимально сочетаться бактерицидное и бактериостатическое действие, но с превалированием первого, что находит отражение в большинстве кожных антисептиков.
Для антисептической обработки в РК рекомендуется применение йодоната 1%, йодопирона 1%, спиртовой настойки йода 5%, хлоргексидина биглюконата в 70 % этиловом спирте 0,5%, различные спиртосодержащие средства с красителями и денатурирующими добавками «Инол», «Септоцид Р плюс», «Септоцид-синерджи» и др.
Однако использование таких антисептиков у лиц с высоким риском возникновения аллергических реакций, больных бронхиальной астмой и другими аллергическими заболеваниями, нежелательно, вследствие возможных побочных явлений аллергического характера [13]. Однако, чем более эффективные средства используются для обработки рук хирурга операционного поля, тем более выражено их повреждающее действие на кожу. Естественно, кожа не - является пассивным материалом и быстро реагирует на действие различных антисептиков. Механизм действия антисептиков во многом зависит от происходящих в поверхностном слое кожи сложных химико-физических, биологических и других процессов. Многие хирурги не всегда уделяют этому достаточного внимания, хотя и считается общеизвестно, что процессы обеззараживания связаны непосредственно с физиологией кожи [14,15,16]
В настоящее время, вследствие растущей антибиотикорезистентности микроорганизмов, большое значение в плане профилактики и лечения инфекции у ожоговых больных имеет местное применение антисептиков. Однако анализ научной литературы показывает, что неуклонно растёт и число микроорганизмов, резистентных к антисептическим препаратам.
Разработка и усовершенствование ранозаживляющих средств, используемых при хирургической обработке и туалете дефектов кожных покровов у пострадавших от ожогов, является одной из актуальных задач хирургии и комбустиологии [17,18]
Нельзя оставить без внимания тот факт, что частота послеоперационных осложнений при травме печени, по данным разных авторов, колеблется от 20 до 80 %. Наиболее частыми и тяжелыми осложнениями при травме печени являются абсцессы печени, подпеченочные и поддиафрагмальные абсцессы, некроз частей печени и особенно гемобилия, которая ведет к развитию желчных свищей и более тяжелых осложнений.
Выполнение полноценной хирургической обработки раны печени с иссечением нежизнеспособных тканей, адекватная санация и дренирование зоны повреждения предупреждают развитие инфекционных осложнений. Но, в случае обширных повреждений печени, соблюдения этих принципов бывает недостаточно. В связи с этим, для профилактики и лечения инфекционных осложнений при травме печени в эксперименте использован антисептический препарат «Kodan Tinkture Forte coloured». Специальное изучение такого вопроса позволяет считать, что основным недостатком большинства способов бактерио-биологического контроля степени обеззараживания кожных покровов является недооценка сложности стерилизации кожи как живого органа и особенностей обитания микрофлоры на ней. Однако, на огромном фоне этих исследований, проблемы влияния применяемых препаратов на защитные свойства кожных покровов, рук хирурга и операционного поля остаются мало изученными.
Универсальные средства, использование которых возможно во всех фазах раневого процесса, пока еще не созданы. При лечении пострадавших с ожоговой травмой дифференцированно, с учетом стадии и фазы течения раневого процесса последовательно используется множество лекарственных форм препаратов с разными механизмами действия. В результате неадекватного неоперативного лечения пациентов с поверхностными ожоговыми поражениями могут образовываться рубцовые деформации и контрактуры [19]
В настоящее время в РК большое внимание уделяется внедрению новых дезинфектантов и антисептиков с высокими антимикробными и более безопасными в токсикологическом и экологическом отношениях свойствами.
Все эти соображения послужили основой для выполнения данного экспериментального исследования.
Цель исследования.
Изучить воздействие антисептика «Kodan Tinkture Forte Coloured» при моделированных абсцессах печени, гнойнонекротических процессах в ране в условиях эксперимента.
Задачи:
- Произвести сравнительный анализ эффективности антисептика «Kodan Tinkture Forte Coloured» при обработке моделированного абсцесса печени.
- Определить влияние на ранозаживляющие свойства кожного антисептика «Kodan Tinkture Forte Coloured», используя его при туалете гнойно-некротического процесса раневой поверхности кожных покровов в условиях эксперимента.
Материалы и методы исследования
Экспериментальные исследования проведены на 6 кроликах породы шиншилла. Для исследования отбирались животные без внешних признаков заболевания, прошедшие карантин в виварии КазНМУ. Работа выполнена на базе Клинико-экспериментальной лаборатории НИИ
фундаментальной и прикладной медицины им Б.Атчабарова. Опыты на животных выполнялись в соответствии с правилами гуманного обращения с животными, которые регламентированы «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных». Животных содержали согласно ветеринарному законодательству, и подвергли эвтаназии в соответствии с требованиями по гуманитарному содержанию и использованию животных в экспериментальных целях. Животные были поделены на 2 группы.
- группа – произведено моделирование абсцесса печени (Способ моделирования инфицированной раны печени: Пат.2261482 РФ: МКИ6 G09 В23/28/ Е.Г.Григорьев, Е.Е. Чепурных, С.А. Лепехова идр. Заявлено 11.02.04; Опубл. 27.09.04, Бюл. № 27). Кол-во – 3.
- группа – произведено моделирование гнойнонекротической раны. (Методика П.И. Толстых; 1976г.) Кол- во – 3.
В первой группе животных, под общим наркозом, в стерильных условиях произведено моделирование абсцесса печени. (Способ моделирования инфицированной раны печени: Пат.2261482 РФ: МКИ6 G09 В23/28/ Е.Г.Григорьев, Е.Е. Чепурных, С.А. Лепехова идр. Заявлено 11.02.04; Опубл. 27.09.04, Бюл. № 27).
При моделировании абсцесса печени, в рану выведена латеральная доля печени, в паренхиму печени инъекционным способом введено 2,0 мл стафилококкового гноя. Выполнено повреждение доли печени по типу декапсуляции, общей площадью до 1 см2. Выполнено тампонирование зоны повреждения марлевым тампоном. Результаты наблюдений за экспериментальными животными показали, что уже на первые сутки появлялись явления интоксикации: животные отказывались от приема пищи, становились вялыми, адинамичными.
Диагноз абсцесса печени у экспериментальных животных был поставлен на основании клинических данных и подтвержден результатами операции.
Клиническая картина абсцесса печени во всех группах животных до начала лечения была одинаковой и имела неспецифичные признаки: симптом общей интоксикации, лихорадка, слабость, появление желтушности склер, рвота. Вскрытие абсцесса печени и обработка патологической полости производилась на 3-и сутки (через 48 ч) после моделирования абсцесса.
В асептических условиях, под общей анестезией, после срединной лапоратомии, выведена в рану латеральная доля печени, изолирована марлевыми тампонами, на поверхности печени выявлен округлый участок, очагового образования, плотной консистенции, толстой иглой пунктирован. Обнаружен гнойный экссудат. Не вынимая иглы, ткань печени рассечена по игле, вскрыта полостьабсцесса, где, после опорожнения, производена обработка полости раствором антисептика. Произведено ушивание раны печени, гемостаз, ушивание лапаротомной раны.
Животные были распределены на серии в зависимости от вида применяемого антисептика при обработке полости абсцесса.
В 1-й серии животным производили обработку полости абсцесса марлевым тампоном, смоченным только физиологическим раствором NaCl 0.9% (контрольная группа).
Во 2-й серии - производили обработку полости абсцесса марлевым тампоном, пропитанным раствором йодоната 1%. В 3-й - производили обработку полости абсцесса марлевым тампоном, пропитанным «Kodan Tinkture Forte Coloured».
Во второй группе животных, под общим наркозом, в асептических условиях, произведено моделированиеи гнойной раны по методике П.И. Толстых (1976). Для этого - на спине, на выбритом от шерсти и обработанном антисептиком участке, иссечена кожа с подкожной клетчаткой размером 15x15 мм, в рану введен марлевый шарик, смоченный 2,0 мл стафилококкового гноя, рана ушита. На 3-и сутки (через 48 ч) после снятия швов края раны разведены, марлевый тампон удален, эвакуирован гной, у всех животных сформировалась гнойная рана со всеми характерными признаками воспаления.
Во 2 группе лабораторных животных, клиническая картина гнойной кожной раны во всех сериях до начала лечения была одинаковой. Раны характеризовались подрытыми, рубцово-фибринозными краями, вялыми и тусклыми грануляциями, с очагами некротических изменений.
В зависимости от способа лечения экспериментальной гнойной раны животные были распределены на 3 серии по 3 кролика в каждой.
В 1-й серии животным производили ежедневную обработку раны только физиологическим раствором NaCl 9%(контрольная группа)
Во 2-й серии - ежедневно производили обработку раны раствором йодоната 1%.
В 3-й - ежедневно производили обработку раны «Kodan Tinkture Forte Coloured».
Течение раневого процесса у экспериментальных животных оценивали клиническим методом: фиксировали сроки ликвидации отека окружающих тканей, сроки очищения раны, появления грануляций, начала краевой эпителизации и полного заживления раны.
Для объективной оценки скорости заживления раны использовали метод Л.Н. Поповой. На 1, 3, 5 и 7 сутки на рану накладывали стерильный лист целлофана, на котором маркером обрисовывали ее контуры. Целлофан с полученным контуром клали на миллиметровую бумагу и определяли площадь раны. Данную процедуру выполняли поочередно всем исследуемым животным. Определив площадь ран у экспериментальных животных в каждой серии, вычисляли среднюю площадь (M ± m), процент уменьшения площади ран от исходного размера (т.е. процент заживления раны) и скорость заживления ран (т.е. процент уменьшения площади за сутки).
Вычисление проводилось по следующем правилам. Площадь проекции раны (Р) равняется сумме хорд, умноженной на расстояние между параллельными линиями (0,5 или 1 см). Хордами в данном случае следует считать отрезки параллельных линий, ограниченных контуром раны (как AA, BB и т. д.).
Животных выводили из эксперимента на 7-е сутки после моделирования абсцесса печени, путем эвтаназии (внутримышечное введение 10мл. раствора «Рометар»). В асептических условиях оценивали патологоанатомические изменения.
Результаты .
В 1 серии 1-ой группы у всех лабораторных животных сохранялись клинические признаки абсцесса печени: симптом общей интоксикации, лихорадка, слабость, появление желтушности склер, рвота. При аутопсии печень характеризовались наличием округлого очагового образования, расположенного в латеральной доле, с крупной одиночной полостью. В прилежащей к абсцессу ткани печени отмечались признаки выраженного перифокального воспаления. В полости абсцесса определялось однородное содержимое, обусловленное наличием гноя и тканевого детрита.
Во 2-ой и 3-ей серии 1-ой группы у лабораторных животных клинические признаки абсцесса печени на 7 сутки отсутствовали. На секции, в печени у животных 2-ой серии отмечались остаточные признаки перифокального воспаления, полость абсцесса не определялась, в отличие от 3-ей серии, где отсутствовали признаки воспаления и не определялась полость абсцесса.
Заживление ран в 3-х сериях 2-ой группы протекало с различной скоростью в отдельных фазах раневого процесса. Математическое моделирование динамики заживления позволило представить изменения площади ран (см. Таблицу 1).
Таблица 1 - Заживление ран у экспериментальных животных в процессе лечения (М ± m)
Вывод.
Таким образом, при произведении сравнительного анализа эффективности антисептиков «Kodan Tinkture Forte coloured», йодонат 1% и контрольной серии при обработке полости абсцесса и гнойно-некротического процесса в ране, удалось выявить:
1. В 1-ой группе лабораторных животных, при обработке полости абсцесса, моделированного в эксперименте, раствором антисептика « Kodan Tinkture Forte Coloured» отмечается отсутствие клинических признаков абсцесса печени уже на 5 сутки по сравнению с контрольной серией, и на 7 сутки по сравнению с раствором йодоната 1%. На аутопсии, отмечается отсутствие остаточных признаков перифокального воспаления и полости абсцесса, в отличие от 2-ой серии (йодонат 1%), где отмечались данные признаки на 7 сутки.
2. Анализ математических результатов, полученных при измерении площади ран, показывает, что исходные размеры экспериментальных ран у всех лабораторных животных были сопоставимы по своей площади. С течением времени во всех сериях происходило постепенное уменьшение площади ран в сравнении с предыдущим сроком наблюдения. В сериях 2 и 3 по сравнению с контрольной достоверное различие по проценту уменьшения площади ран отмечается с первых по седьмые сутки. Между 2-ой и 3- ей сериями достоверное различие по проценту уменьшения площади ран отмечается только на 5-7 сутки (см. табл. 1). Таким образом, полученные данные планиметрического исследования указывают на наличие высокой ранозаживляющей активности «Kodan Tinkture Forte Coloured» в сравнении с применяемыми методиками.
Серии |
Скорость заживления %/сут |
||
1 -3 сутки |
3- 5 сутки |
5-7 сутки |
|
1 серия (конроль) |
9,13±0,75 |
13,25±0,68 |
5,75±0,89 |
2 серия (йодонат 1%) |
16,98±0,25 |
19,12±0,28 |
7,15±0,94 |
3 серия (Kodan Tinkture Forte coloured) |
15,95±0,97 |
20,35±0,97 |
9,16±0,82 |
СПИСОК ЛИТЕРТУРЫ
- Современные воззрения и практика хирургической и гигиенической антисептики / А. П. Красильников [и др.]. – Здравоохранение. – 1996. – № 12. –С. 20-23.
- Клюжев, В. М. Эпидемиологические и организационные аспекты профилактики внутригоспитальных инфекций / В. М. Клюжев, В. Г. Акимкин. Воен.- мед. журн. – 1996. – № 8. – С. 23.
- Профилактика внутрибольничных инфекций: руководство для врачей / под ред. Е. П. Ковалевой, H. А. Семиной. – М.: ТОО «Рарогъ», 1993. –228 с.
- Bucher, A. Hand hygiene - is hand disinfection the best solution? / A. Bucher // Tidsskr. Nor. Laegeforen. – 2000. – N 120 (4). – P. 472475.
- Черкашин, М. А. Местные антисептики в хирургической практике / М. А. Черкашин // Русский мед. журн. [Электронный ресурс]. – 2007. – Т. 15, №22. – С. 45-48.
- Веткина И.Ф., Комаринская Л.В., Ильин И.Ю., Соловьева М.В. Современный подход к выбору дезинфицирующих средств в системе профилактики внутрибольничных инфекций (вби); "фарминдекс-практик". – Вып. 7 – 2005. - С. 13-20.
- ElliotI. M.Z. A Short History of Surgical Dressings // Pharmaceutical press. - London: 1964. – Р. 18-22.
- Войффен В., Обердестер Ф., Крамер А. Больничная гигиена. – Минск: изд-во «Белорусь», 1994. - 464 с.
- Вашков В.И. Руководство по дезинфекции и дератизации – М.: Медгиз, 1992. - 656 с.
- Weuffen W. Handbuch der Desinfektion und Sterilisation. – Berlin: Bd. 1. - 1972. - 406 р.
- Методические указания по применению дезинфицирующего средства «ДЕЗЭФЕКТ» (ЗАО «Центр дезинфекции», Россия) // Утв. Руководителем Департамента госсаэпиднадзора Минздрава России Ивановым С.И. №113/277-09 от 20 августа 2001 г. - М.: 2001. - 22 с.
- Обеззараживание средством «Люмакс Стерил» (ООО «Технодез», Россия) изделий медицинского назначения из различных материалов, загрязненных спорами возбудителя сибирской язвы» //отчет по HИР, ВолгHИПЧИ – Волгоград: 2004. - 57 с.
- Машковский, М. Д. Лекарственные средства / М. Д. Машковский. – М.: РИА «Hовая Волна», 2007. – 1206 с.
- Абдулгалимова, З. Б. Кожные антисептики в многопрофильном стационаре // Hовая аптека. Аптечный ассортимент. – 2008. – № 6. – С. 60-65.
- Современные воззрения и практика хирургической и гигиенической антисептики / А. П. Красильников [и др.] // Здравоохранение. – 1996. – № 12. –С. 20-23.
- Климиашвили, А. Д. Современные аспекты стерилизации рук хирурга и операционного поля / А. Д. Климиашвили // Русский мед. журн. [Электронный ресурс]. – 2005. – Т. 13. - № 9.
- Красильников, А. П. Справочник по антисептике / А. П. Красильников. – Минск: Выш. шк., 1995. – 267 с.
- Чистенко, Г. H. Основы дезинфекции. Химический метод дезинфекции / Г. H. Чистенко // Мир медицины. – 2005. – № 11. – С. 3-5.
- Способ моделирования инфицированной раны печени: Пат.2261482 РФ: МКИ6 G09 В23/28/ Е.Г.Григорьев, Е.Е. Чепурных, С.А. Лепехова идр. Заявлено 11.02.04; Опубл. 27.09.04, Бюл. № 27
- Методика моделирования гнойной раны: П.И. Толстых. – М.: 1976. – С. 47-56.